快速结论
如果您已經有 NanoDrop 或分光光度計讀數，這裡可以一次給出 DNA/RNA 濃度、A260/280、A260/230，以及可選的總量。
適合快速判斷樣本是否進入 qPCR、清理步驟、建庫流程，或繼續換算成拷貝數。
使用方法（3步）
- 選擇核酸類型（dsDNA/RNA等）並輸入A260/A280/A230。
- 如果使用稀釋進行測量，請輸入稀釋係數（無稀釋 = 1）。
- 濃度和比率自動顯示。加入體積以查看總量。
常見用途：先判斷提取產物是否足夠乾淨、是否值得重測，然後再把結果交給 qPCR 或 NGS 下游步驟。
A260 換算因子和比值參考範圍會隨樣品與實驗條件而變化。這裡給出的内容僅作參考，請結合您的檢測方法確認。
輸入（類型，A260/A280/A230，稀釋）
—
dsDNA=50 和 RNA=40 是常用指南。如果需要，請使用自訂因子。
空白校正（可選）
许多儀器已經應用空白校正。僅在需要時启用。
結果（濃度和比率）
輸入值後，結果将顯示在此处。
濃度（纳克/微升）
—
濃度（微克/毫升）
—
A260/280
—
A260/230
—
稀釋倍數
—
總量（體積×濃度）
— / —
A260/280指南： —
A260/230指南： —
关于比例指南（參考）
—
1 µg/mL = 1 ng/µL（相同數值）。
比率解釋取决于测定；本頁面不做出明確判斷。
匯出（複製/CSV/LaTeX/分享URL）
計算方法
- 濃度 (μg/mL) = A260 × 因子 × 稀釋度（dsDNA=50，RNA=40 為參考值）
- A260/280 = A260 ÷ A280 (A280 ≠ 0)
- A260/230 = A260 ÷ A230 (A230 ≠ 0)
- 輸入體積計算總量（ng/μg）
如何更稳妥地解读結果
建議先保留一組基準測量，再一次只調整一個條件。這樣更容易判斷變化來自稀釋倍數、換算因子，還是空白校正。
先看哪些項目
- 先確認核酸類型是否正确，再接受預設因子。
- 把 A260/280 和 A260/230 當作參考區間，不要直接當作最終結論。
- 如果填寫了體積，請顺手核对總量是否符合预期回收量。
如何判斷結果是否一致
可以比較不同稀釋倍數下校正後濃度是否仍然在合理範圍內。如果濃度看起來正常，但兩個比值大幅波動，問題往往更接近空白設定或樣本品質，而不是計算公式本身。
什麼時候值得重測
如果空白校正後比值變化很大，或換一個稀釋倍數後結果明顯漂移，最好先複查原始測量，再記錄最終數字。
下一步建議
當濃度已可信時，可記錄 A260、A260/280、A260/230 與稀釋倍數，再把濃度結果用於 qPCR、定量稀釋或 NGS 前處理。
常見問題
dsDNA 因子 50 是固定的嗎？
它是常用的指南，但可能會因樣品和條件而异。如果需要，請使用自訂因子。
A260/280和A260/230表示什麼？
它們經常被引用作為蛋白質或鹽/溶劑污染的指南，但它們並不是絕對判定。
輸入音量顯示什麼？
它根據濃度計算试管中的總量 (ng/μg)。
我需要空白校正嗎？
许多儀器在内部進行校正。僅在需要時启用它。
資料會傳送到任何地方嗎？
所有計算都在您的瀏覽器中執行；資料不會傳送。
快速判斷下一步
- 如果濃度看起來合理，但 A260/280 或 A260/230 波動很大，先重測或複查空白校正，再決定是否採用該數值。
- 如果樣本產量低或樣本很重要，建議先用螢光法再次確認濃度，再制定最終稀釋方案。
- 如果樣本狀態可接受且要進入表現量分析，可把本頁結果作為 qPCR 前的濃度檢查記錄。
- 如果樣本狀態可接受且要做建庫或 pooling，先保留換算前後的濃度與稀釋紀錄。
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