Réponse rapide
Si vous avez déjà une lecture NanoDrop ou spectrophotomètre, cette page renvoie en une fois la concentration ADN/ARN, A260/280, A260/230 et, si besoin, la quantité totale.
Pratique pour décider vite si l'échantillon peut passer en qPCR, en cleanup, en préparation de librairie ou en conversion en copies.
Comment utiliser (3 étapes)
- Sélectionnez le type d’acide nucléique (dsDNA/RNA, etc.) et entrez A260/A280/A230.
- Si mesuré avec dilution, entrez le facteur de dilution (pas de dilution = 1).
- La concentration et les ratios apparaissent automatiquement. Ajoutez du volume pour voir le montant total.
Cas d'usage typiques : vérifier si une extraction est assez propre, décider s'il faut refaire la lecture ou préparer le relais vers qPCR ou NGS.
Les facteurs A260 et les guides de ratio varient selon l'échantillon et les conditions. Ils sont présentés à titre de référence ; confirmez avec votre test.
Entrée (type, A260/A280/A230, dilution)
—
dsDNA=50 et RNA=40 sont des guides courants. Utilisez un facteur personnalisé si nécessaire.
Correction à blanc (facultatif)
De nombreux instruments appliquent déjà une correction à blanc. Activez uniquement si nécessaire.
Résultats (concentration et ratios)
Les résultats apparaîtront ici une fois que vous aurez entré les valeurs.
À propos des guides de ratio (référence)
—
1 µg/mL = 1 ng/µL (même valeur numérique).
L'interprétation du rapport dépend du test ; cette page ne porte pas de jugement définitif.
Exporter (copier / CSV / LaTeX / partager URL)
Comment c'est calculé
- Concentration (µg/mL) = A260 × facteur × dilution (ADNdb=50, RNA=40 sont des guides)
- A260/280 = A260 ÷ A280 (A280 ≠ 0)
- A260/230 = A260 ÷ A230 (A230 ≠ 0)
- La saisie du volume calcule la quantité totale (ng/µg)
Comment interpréter le résultat
Commencez par une mesure de base puis modifiez un seul paramètre à la fois. Cette méthode permet de voir rapidement si l'écart vient de la dilution, du facteur choisi ou de la correction à blanc.
Points à vérifier
- Vérifiez le type d'ADN/ARN avant de garder le facteur par défaut.
- Utilisez A260/280 et A260/230 comme repères pratiques, pas comme conclusion définitive.
- Si vous renseignez un volume, comparez la quantité totale calculée avec le rendement attendu.
Comment contrôler la cohérence
Regardez si la concentration corrigée évolue de façon logique lorsque vous changez la dilution. Si la concentration semble plausible mais que les rapports bougent fortement, la cause est souvent liée au blanc ou à la qualité de l'échantillon plutôt qu'au calcul.
Quand refaire la mesure
Si les rapports changent fortement après correction à blanc ou avec une autre dilution, il vaut mieux vérifier la mesure d'origine avant de retenir la valeur finale.
Étape suivante conseillée
Une fois la concentration validée, poursuivez avec le convertisseur ADN/ARN vers molaire ou copies, la courbe étalon qPCR ou le calculateur de Tm d'amorce selon votre workflow.
FAQ
Le facteur ADNdb de 50 est-il fixe ?
Il s’agit d’un guide couramment utilisé, mais il peut varier selon l’échantillon et les conditions. Utilisez un facteur personnalisé si nécessaire.
Qu'indiquent les A260/280 et A260/230 ?
Ils sont souvent cités comme guides pour la contamination par les protéines ou les sels/solvants, mais ils ne sont pas définitifs.
Que montre la saisie du volume ?
Il calcule la quantité totale (ng/µg) dans le tube à partir de la concentration.
Ai-je besoin d'une correction en blanc ?
De nombreux instruments corrigent en interne. Activez-le uniquement si nécessaire.
Les données sont-elles envoyées quelque part ?
Tous les calculs s'exécutent dans votre navigateur ; les données ne sont pas envoyées.
Guide rapide pour choisir la suite
- Si la concentration semble cohérente mais que A260/280 ou A260/230 bouge trop, refaites la mesure ou revérifiez le blanc avant de retenir la valeur.
- Si l'échantillon est peu abondant ou important, confirmez la concentration avec une méthode par fluorescence avant de fixer la dilution finale.
- Si l'échantillon est acceptable et que vous passez à l'expression génique, poursuivez avec la courbe standard qPCR ou le flux ΔΔCt.
- Si l'échantillon est acceptable et que vous préparez des librairies ou un pooling, convertissez d'abord en nM puis passez au calcul de concentration de librairie NGS.
Commentaires (facultatif)
Les commentaires ne se chargent que lorsque vous en avez besoin, pour garder la page légère.