Risposta rapida
Se disponi di una lettura NanoDrop o di uno spettrofotometro, questa pagina indica la concentrazione di DNA/RNA, A260/280, A260/230 e la resa totale opzionale in un unico passaggio.
Utile per un rapido triage dei campioni prima della qPCR, della pulizia, della preparazione delle librerie o della conversione del numero di copie.
Come utilizzare (3 passaggi)
- Selezionare il tipo di acido nucleico (dsDNA/RNA, ecc.) e inserire A260/A280/A230.
- Se misurato con diluizione, inserire il fattore di diluizione (nessuna diluizione = 1).
- La concentrazione e i rapporti vengono visualizzati automaticamente. Aggiungi volume per vedere l'importo totale.
Casi d'uso tipici: verificare se un'estrazione è sufficientemente pulita, decidere se rimisurare dopo la correzione del bianco o preparare un trasferimento ai flussi di lavoro qPCR/NGS.
I fattori A260 e le guide sui rapporti variano in base al campione e alle condizioni. Sono mostrati come riferimenti; conferma con il tuo test.
Dati (tipo, A260/A280/A230, diluizione)
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dsDNA=50 e RNA=40 sono guide comuni. Se necessario, utilizza un fattore personalizzato.
Correzione del bianco (opzionale)
Molti strumenti applicano già la correzione del bianco. Abilita solo se necessario.
Risultati (concentrazione e rapporti)
I risultati verranno visualizzati qui una volta immessi i valori.
Informazioni sulle guide sui rapporti (riferimento)
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1 µg/mL = 1 ng/μL (stesso valore numerico).
L'interpretazione del rapporto dipende dal test; questo calcolatore non dà giudizi definitivi.
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Come viene calcolato
- Concentrazione (μg/mL) = A260 × fattore × diluizione (dsDNA=50, RNA=40 sono indicazioni)
- A260/280 = A260 ÷ A280 (A280 ≠ 0)
- A260/230 = A260 ÷ A230 (A230 ≠ 0)
- L'inserimento del volume calcola la quantità totale (ng/μg)
Domande frequenti
Il fattore dsDNA è pari a 50 fisso?
Si tratta di una guida comunemente utilizzata, ma può variare in base al campione e alle condizioni. Se necessario, utilizza un fattore personalizzato.
Cosa indicano A260/280 e A260/230?
Vengono spesso citati come guide per la contaminazione da proteine o sale/solventi, ma non sono definitivi.
Cosa mostra l'immissione del volume?
Calcola la quantità totale (ng/μg) nella provetta dalla concentrazione.
Ho bisogno di una correzione in bianco?
Molti strumenti correggono internamente. Abilitalo solo se necessario.
I dati vengono inviati da qualche parte?
Tutti i calcoli vengono eseguiti nel tuo browser; i dati non vengono inviati.
Cosa fare dopo aver ottenuto un risultato A260
Utilizzare A260 come controllo di primo passaggio
A260 è utile per una stima rapida della concentrazione e un controllo iniziale della purezza. Usalo per decidere su diluizione, purificazione o passaggio successivo, non come unica prova finale.
Controllare insieme concentrazione e rapporti
Un campione può avere una concentrazione accettabile ma rapporti A260/280 o A260/230 instabili. Leggi i tre valori insieme. Se cambiano molto dopo bianco o nuova diluizione, ripulisci o rimisura il campione.
Quando confermare con un altro metodo
Per librerie, qPCR o campioni a bassa resa, conferma spesso la concentrazione con fluorescenza o con il metodo del laboratorio. È utile quando A260 e resa attesa non concordano.
Flusso di controllo ripetuto
Misura una volta, registra le assorbanze grezze e prova la correzione del bianco solo se non è già applicata. Poi confronta una diluizione alternativa. Se il risultato resta stabile, di solito puoi procedere.
Trasferimento agli strumenti a valle
Quando la concentrazione è credibile, convertila in molarità o copie per la pianificazione. Passa poi a qPCR o normalizzazione libreria solo con misure già controllate.
Guida rapida al passaggio successivo
- Se la concentrazione sembra plausibile ma A260/280 o A260/230 cambia molto, ripetere la misurazione o rivedere la correzione del bianco prima di riportare il valore.
- Se il campione ha una resa bassa o è importante dal punto di vista operativo, confermare la concentrazione con un test basato sulla fluorescenza prima di elaborare un piano di diluizione finale.
- Se il campione è accettabile ed è necessaria l'analisi dell'espressione, continuare con la curva standard qPCR o il flusso di lavoro ΔΔCt.
- Se il campione è accettabile e si stanno preparando librerie o raggruppamenti in pool, convertirlo prima in nM e quindi utilizzare il flusso di lavoro di concentrazione delle librerie NGS.
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